通用ELISA试剂盒开发技术
广州健仑生物科技有限公司研究所.徐华
●用途原理
ELISA(酶联免疫吸附试验)是一种常用的免疫检测技术,具有敏感特异、简便实用、标准稳定等特点,已经成为被广泛采用的检测手段。然而,ELISA的工作准备烦琐而复杂,许多试剂需要临时配置,不仅费时费力,而且影响结果的重复性。
为此,我公司吸收国内外先进技术,结合自身成熟工艺,开发出通用的即开即用ELISA试剂盒,适应于各种抗原抗体ELISA的建立。该盒几乎囊括了ELISA自包被到结果判断过程中所需的各种关键性试剂,并已加工成工作状态,达到开盒即用的效果;同时还提供了具体详细的操作流程和注意事项,可以协助操作者顺利完成ELISA试验。
试剂盒让ELISA操作变得简单、方便!
●试剂组成
1.空白微孔板(48/96T) 1套; |
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5.显色剂TMB (4号液) 1瓶; |
2.酶结合物稀释液(1号液) 1瓶; |
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6.样本稀释液 (5号液) 1瓶; |
3.洗涤剂 (2号液) 1瓶;
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7.终止液 (6号液) 1支; |
4.底物(3号液) 1瓶 |
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8.使用说明书 1份; |
●操作程序
包被流程
1.将包被蛋白用包被液按比例稀释,参考浓度5ug—50ug/ml不等,纯度高的蛋白浓度可以低一些,反之亦然;充分稀释后,按100ul/孔准确加样。2-8℃18小时。
2.甩去孔中液体,用0.05M氯化钠溶液注满各孔,再甩去。
3.加入封闭液,充分溶解混匀。按120ul/孔加入各孔。37℃2小时,甩去后拍干即可使用。临时保存可以放入自封袋内,密封后置于2-8℃保存。
检测流程
1. 样本稀释:用样本稀释液(5号液)将待检样本按合适比例稀释(一般间接法ELISA为1:100)。
2. 加样反应:每孔加已稀释样本100ul。同时设阴性、阳性及空白对照各一孔。空白对照孔 加入100ul样本稀释液(5号液)。37℃温育,时间一般为30-60分钟,甩去,每孔加洗涤液(2号液)一滴,立即用蒸馏水加满,静止30秒,甩去;如此洗涤五次,甩去,拍干。
3. 加酶反应:将酶结合物用酶结合物稀释液(1号液)按参考比例稀释,而后按100ul/孔加入, 37℃反应30-60分钟。甩去,加洗涤液(2号液)一滴,立即用蒸馏水同上洗涤五次,甩去,拍干。
4. 显色反应:加底物(3号液)和显色剂(4号液)各一滴,混匀, 37℃下放置3-10分钟,加终止液(6号液)一滴混匀,终止反应。
●结果判断
1.肉眼观察:浅于近于阴性对照为阴性; 呈明显深于阴性对照的蓝色为阳性。
2.仪器判断:450nm读取O.D值,待检孔O.D值大于阴性对照2.1倍者为阳性.空白对照调零。当阴 性对照O.D值低于0.07时,按0.07计算。
● 问题与技巧
ELISA是一种敏感的免疫学检测方法,容易受到各种因素的干扰。要保证实验的可靠性,必须注意每个环节。以下是常见的问题以及相关的解决方法:
1 包被不上抗原(抗体):
* 包被抗原应是可溶性的,不溶性蛋白结合性能很差,比如一些重组蛋白包涵体、组蛋白、胶元旦白或脂类抗原。
解决:可以采用改变包被液PH,采用尿素溶解,改变溶剂等方法将抗原变为可溶性。
* 包被抗原分子量太小,如合成多肽类。
解决:可以采用共价键结合模式,包被抗原。
* 包被抗原的浓度不够。
解决:可以适当提高包被抗原量或选取高吸附包被板,但过度包被会形成叠层,反而影响实际
结合量,甚至造成本底升高。
* 包被液PH不当会改变蛋白质的电荷状况,直接影响空间结构及抗原表位。
解决:可以测定等电点(PI),并系列改变PH,以寻求最适的PH值。
此外,在包被抗体时,适当预先低度变性,可以增加包被量。
2 本底很高
* 抗原本身不纯,如有交叉表位,或有杂蛋白成分等。
解决:杂蛋白可以通过盐析、层析纯化去除;而交叉表位处理较为复杂,需要在表位选择时认真考虑。
* 包被板封闭不佳,在包被板上留有较多的空白。
解决:提高封闭剂浓度,选择更有效的封闭蛋白。
* 样本问题,首先是稀释不够:间接法ELISA一般要求血清稀释在1:50以上,其它体液可以浓度大一些;
解决:系列稀释样本,以选择最佳比例。
* 其次,样本高脂、高色素、溶血以及污染长菌,都有可能造成本底上升;
解决:要采用新鲜无溶血标本,低温冻存。
* 最后可能与样本稀释液有关,样本稀释液的PH、离子强度等都会影响非特异性结合;
解决:可以采用可靠的样本稀释液或自行调整PH、缓冲系等条件。
* 酶浓度过高,造成非特异性上升;
解决:应当选择恰当酶浓度。
3 反应强度不够
* 除与抗原活性、包被效果相关外,主要受酶结合物性质和浓度的影响。一般,稀释后的酶结合物失活很快,半衰期仅3天。
解决:采用本试剂盒的酶稀释液可以有效保护酶活性,大大延长酶反应能力。此外,采用高纯度的二抗(有亲和层析的单克隆抗体酶最佳)。
延长反应时间也可以一定程度提高反应强度。
4 显色问题
* 全部白板。原因与漏加酶液,酶液失活,显色体系失效等。
解决:可以取确认正常的酶液20ul,直接滴加底物和显色剂各一滴,观察显色情况。正常应在60秒钟出现明显兰色,否则,应认为显色体系有问题,需要更换。
* 肉眼观察颜色很深,酶标仪读数却很低。如仪器工作正常,往往是选择的波长不匹配。
解决:TMB显色剂被硫酸终止后,呈黄色,应在450NM处测定(注意:另外一种显色剂OPD则在492NM测定)。
* 定量测定抗原或抗体时,线性范围窄。
解决:ELISA的反应在O.D值0.2-1.0区间较为稳定,超出以后,系统误差加大,变得不太稳定。可以在调整反应到此区间。
5 操作过程中的其它问题与解决,见附表:
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